Manual de Laboratorio de Recurso Agua
Introducción
El presente manual de laboratorio de Recurso Agua está diseñado como una guía educativa moderna, que recopila los procedimientos, materiales y normas necesarias para el adecuado desarrollo de las prácticas de laboratorio en el estudio del recurso hídrico. Su propósito es fortalecer las competencias técnicas de los estudiantes del programa de Tecnología en Manejo de Recursos Ambientales, promoviendo el trabajo seguro, la rigurosidad científica y la comprensión de los procesos físico-químicos involucrados en la evaluación de la calidad del agua.
• Usar siempre bata blanca, guantes de nitrilo y gafas de seguridad.
• Evitar el consumo de alimentos y bebidas dentro del laboratorio.
• No correr, hacer bromas o realizar experimentos no autorizados.
• Mantener el área de trabajo limpia y ordenada.
• Reportar inmediatamente cualquier accidente o derrame químico.
• No pipetear con la boca ni calentar sustancias en recipientes cerrados.
• Lavar cuidadosamente las manos antes y después de cada práctica.
Protocolo 1️⃣ Preparación y Estandarización de Soluciones Ácido–Base
Este protocolo permite comprender los principios de concentración, normalidad y molaridad, así como la correcta estandarización de soluciones básicas y ácidas empleadas en el laboratorio.
🧾 Protocolo 2 – Toma de Muestras de Agua Cruda y Monitoreo (Método del Flotador)
💧 Introducción
⚗️ Tipos de Muestras
Muestra puntual: tomada en un momento y lugar específicos.
Muestra compuesta: mezcla de varias muestras puntuales en distintos tiempos o lugares.
Muestra integrada: mezcla simultánea de muestras tomadas en diferentes puntos.
🧰 Materiales y equipos
pH–metro y termómetro.
Cinta métrica, cronómetro.
Frascos para muestras y etiquetas.
Palos de escoba, cuerdas, flotadores (pelotas de ping-pong).
Probeta, hojas de trabajo.
🧪 Procedimiento: Método Área–Velocidad con Flotador
Seleccionar un tramo recto del río o canal de 5–10 metros.
Medir el ancho y profundidad promedio en varios puntos.
Calcular el área transversal (A):
Soltar el flotador aguas arriba y medir con cronómetro el tiempo (t) que tarda en recorrer la distancia (L).
Calcular la velocidad superficial (Vsup):
Determinar el caudal (Q):
Rotular los frascos con: punto, fecha, hora, responsable y parámetros a analizar.
📚 Bibliografía
Lozano-Rivas, W. Calidad fisicoquímica del agua, 2013.
Guía para el monitoreo de vertimientos y aguas superficiales, CORPONOR (2018).
⚗️ Protocolo 3 – Determinación de Acidez y Alcalinidad en el Agua
💧 Introducción
La acidez y la alcalinidad son parámetros esenciales en el análisis de la calidad del agua, ya que determinan su capacidad para neutralizar bases o ácidos, respectivamente.
Las aguas muy ácidas pueden causar corrosión en tuberías y afectar la vida acuática.
Las aguas muy alcalinas generan incrustaciones y problemas en sistemas hidráulicos.
⚛️ Conceptos Clave
Acidez: capacidad del agua para neutralizar bases (aceptar iones OH⁻ o ceder H⁺).
Alcalinidad: capacidad del agua para neutralizar ácidos (aceptar protones H⁺ o reaccionar con ellos).
Los iones que más contribuyen a la alcalinidad son: bicarbonatos (HCO₃⁻), carbonatos (CO₃²⁻) e hidróxidos (OH⁻).
🧰 Materiales y Reactivos
Bureta de 25 mL.
Matraz Erlenmeyer de 250 mL.
Probeta de 100 mL.
Indicadores: fenolftaleína y naranja de metilo.
Soluciones: H₂SO₄ 0.1 N, NaOH 0.1 N, tiosulfato de sodio 0.1 N.
Soporte universal, pinzas y vaso de precipitado.
🧪 Procedimiento: Determinación de Alcalinidad
Colocar 100 mL de muestra en un matraz Erlenmeyer.
Agregar 1 gota de tiosulfato de sodio (0.1 N).
Añadir 2 gotas de indicador naranja de metilo.
Titular con H₂SO₄ (0.1 N) hasta un ligero color naranja (pH ≈ 4.5).
Registrar el volumen de ácido gastado.
Cálculo de Alcalinidad:
🧪 Procedimiento: Determinación de Acidez
Colocar 100 mL de muestra en un matraz Erlenmeyer.
Medir el pH inicial.
Agregar 1 gota de tiosulfato de sodio y 4 gotas de fenolftaleína.
Titular con NaOH (0.1 N) hasta un ligero color rosado (pH ≈ 8.3).
Registrar el volumen de NaOH utilizado.
Cálculo de Acidez:
📋 Interpretación
Si la alcalinidad es mayor que la acidez → el agua es básica o alcalina.
Si la acidez es mayor → el agua es ácida.
Valores neutros o cercanos a 100 mg/L de CaCO₃ indican buena estabilidad química.
📚 Bibliografía
Romero, J. Calidad del Agua. McGraw Hill, 2ª Edición.
APHA. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater, 1999.
🧱 Protocolo 4 – Determinación de Dureza en el Agua
💧 Introducción
Aunque no representa un riesgo directo para la salud, la dureza influye en la calidad del agua para consumo, uso industrial o doméstico.
⚛️ Tipos de Dureza
Dureza temporal (carbonatada): causada por bicarbonatos y carbonatos de Ca y Mg; puede eliminarse por ebullición.
Dureza permanente (no carbonatada): causada por sulfatos, cloruros o nitratos de Ca y Mg; no desaparece por ebullición.
| Dureza (mg/L CaCO₃) | Interpretación |
|---|---|
| 0 – 75 | Suave |
| 75 – 150 | Poco dura |
| 150 – 300 | Dura |
| > 300 | Muy dura |
🧰 Materiales y Reactivos
Matraz Erlenmeyer 250 mL.
Bureta de 25 mL.
Pipeta de 5 mL.
Solución buffer pH 10.
Indicador Eriocromo Negro T.
Solución titulante EDTA (sal disódica) 0.01 N.
Solución de CaCl₂ 0.01 N para estandarización.
🧪 Principio del Método
Reacción general:
⚗️ Estandarización del EDTA
Colocar 5 mL de CaCl₂ 0.01 N en un Erlenmeyer.
Agregar 5 gotas de buffer pH 10 y 3 gotas de Eriocromo Negro T.
Titular con EDTA hasta el viraje de púrpura a azul.
🧪 Determinación de Dureza Total
Medir 100 mL de muestra.
Agregar 5 gotas de buffer pH 10 y 3 gotas de indicador.
Titular con EDTA 0.01 N hasta el viraje púrpura → azul.
Cálculo:
🧮 Determinación de Dureza Cálcica
Tomar 100 mL de muestra.
Ajustar el pH a 13 con NaOH.
Añadir murexida como indicador.
Titular con EDTA hasta el cambio de rosa a violeta.
Cálculo:
🧩 Determinación de Dureza Magnésica
📚 Bibliografía
Romero, J. A. Calidad del Agua, McGraw Hill, 2ª edición.
APHA. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater, Método 2340C, 1999.
🧂 Protocolo 5 – Determinación de Cloruros en el Agua
💧 Introducción
Los cloruros, en concentraciones elevadas, afectan la potabilidad, aceleran la corrosión de tuberías y pueden salinizar los suelos agrícolas.
⚛️ Principio del Método
El método de Mohr consiste en titular los iones cloruro presentes en la muestra con una solución de nitrato de plata (AgNO₃) en presencia de cromato de potasio (K₂CrO₄) como indicador.
La plata reacciona con el cloruro formando cloruro de plata (AgCl), un precipitado blanco.
Cuando todo el cloruro ha reaccionado, el exceso de plata forma cromato de plata (Ag₂CrO₄), de color ladrillo rojizo, indicando el punto final de la titulación.
🧰 Materiales y Reactivos
Matraz Erlenmeyer de 100 mL.
Bureta de 25 mL.
Probeta de 50 mL.
Solución AgNO₃ 0.0141 N (titulante).
Solución NaCl 0.0141 N (patrón).
Solución indicadora de K₂CrO₄ (5 g / 100 mL de agua destilada).
Soluciones de NaOH 0.2 N y H₂SO₄ 0.02 N para ajustar pH.
🧪 Procedimiento
Medir 25–50 mL de muestra y colocar en un Erlenmeyer.
Verificar que el pH esté entre 7 y 10 (ajustar con NaOH o H₂SO₄ si es necesario).
Agregar 1 mL de solución indicadora de K₂CrO₄.
Titular con AgNO₃ 0.0141 N hasta el viraje amarillo → rojizo ladrillo.
Registrar el volumen de AgNO₃ gastado.
Realizar un blanco con agua destilada para corregir el resultado.
🧮 Cálculo
ó de forma simplificada:
🧩 Interpretación
Valores altos de cloruros indican intrusión salina o contaminación orgánica.
Para agua potable, según la OMS, el límite máximo recomendado es 250 mg/L de Cl⁻.
📚 Bibliografía
Lozano-Rivas, W. Calidad fisicoquímica del agua, Bogotá, 2013.
APHA. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater, Método 4500-Cl⁻, 1999.
🧪 Protocolo 6 – Determinación de Sólidos en el Agua (Totales, Disueltos y Suspendidos)
💧 Introducción
Los sólidos presentes en el agua afectan su apariencia, potabilidad y uso industrial. Se clasifican en:
Sólidos disueltos totales (SDT): pasan a través de un filtro (porción soluble).
Sólidos suspendidos totales (SST): retenidos por un filtro (partículas en suspensión).
Sólidos totales (ST): residuo tras evaporación y secado (SDT + SST).
Medir estos parámetros es fundamental para el diseño de procesos de tratamiento, control de calidad y cálculo de índices ambientales.
🧰 Materiales y equipos
Cápsulas de porcelana (previamente taradas).
Balanza analítica (precisión 0.001 g).
Desecador.
Estufa de secado (103–105 °C).
Equipo de filtración (embudo, soporte, bomba o vacío si aplica).
Filtro de poro 0.45 µm o papel filtro apropiado.
Probeta, vaso de precipitados, pinzas.
Cono Imhoff (para sólidos sedimentables, si se requiere).
⚗️ Preparación y condiciones previas
Limpiar y secar las cápsulas de porcelana. Pesar y registrar la masa tarada (m₀).
Secar las cápsulas en estufa a 103–105 °C y enfriar en desecador antes de pesar para estabilidad.
Filtrar la muestra (si se va a determinar SDT vs SST) usando el equipo y el filtro apropiado.
🧪 Procedimiento A — Sólidos Totales (ST)
Medir un volumen conocido de muestra (normalmente 100 mL).
Verter la muestra en la cápsula tarada.
Evaporar el agua en estufa hasta sequedad total (103–105 °C) — tiempo según volumen y equipo.
Enfriar en desecador y pesar la cápsula con residuo (m₁).
Calcular Sólidos Totales:
Para 100 mL: ST (mg/L) = (m₁ − m₀) × 10
🧪 Procedimiento B — Sólidos Suspendidos Totales (SST)
Filtrar un volumen conocido de muestra (ej. 100 mL) a través del filtro de 0.45 µm o papel filtro tarado.
Lavar, secar y llevar el filtro con el residuo a la estufa (103–105 °C) hasta sequedad.
Enfriar en desecador y pesar (m₂ = masa filtro + residuo). Masa inicial del filtro = m_f.
Calcular SST:
Para 100 mL: SST (mg/L) = (m₂ − m_f) × 10
🧪 Procedimiento C — Sólidos Disueltos Totales (SDT)
(O calcular directamente por evaporación de un filtrado claro si se dispone de volumen y equipo).
🧪 Procedimiento D — Sólidos Sedimentables (Cono Imhoff, opcional)
Verter 1 L de muestra en un Cono Imhoff.
Dejar sedimentar 1 hora sin agitación.
Leer el volumen de sedimento en mL/L.
Expresar como mL/L de sólidos sedimentables.
🧮 Consideraciones y controles de calidad
Realizar blancos (agua destilada) para identificar residuos del equipo.
Repetir en duplicado y promediar resultados.
Asegurarse de que las cápsulas y filtros estén completamente secos antes de pesar.
Notar que muestras con alto contenido orgánico requieren tiempos de secado mayores y precaución para evitar pérdidas por volatilización.
📋 Interpretación (referencial)
SST elevado → problemas de turbidez, posible impacto en procesos de filtración y desinfección.
SDT alto → indica alta mineralización o presencia de sólidos disueltos (sales).
Valores de sólidos sedimentables superiores a 1 mL/L suelen indicar problemas de sedimentación o altos sólidos gruesos.
📚 Bibliografía
APHA. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater — Métodos para sólidos totales y suspendidos.
Manuales institucionales de análisis físico-químico del agua.
⚗️ Protocolo 7 – Ensayo de Coagulación–Floculación (Test de Jarras)
💧 Introducción
⚛️ Principio del método
El proceso se basa en tres etapas:
Coagulación: desestabilización de las partículas cargadas negativamente mediante la adición de un coagulante.
Floculación: formación de flóculos más grandes y pesados por agitación lenta.
Sedimentación: decantación de los flóculos para obtener agua clarificada.
🧰 Materiales y equipos
Equipo de test de jarras con paletas de agitación (6 vasos de 1 L).
Agitador mecánico con control de velocidad.
Probetas, pipetas y buretas.
Turbidímetro o nefelómetro.
Termómetro.
Reactivos:
Sulfato de aluminio Al₂(SO₄)₃·18H₂O (coagulante)
Cal hidratada o NaOH (para ajuste de pH)
Ácido sulfúrico (para bajar pH)
Agua muestra cruda.
⚗️ Preparación de soluciones
Preparar una solución madre de coagulante al 1% (1 g de sulfato de aluminio en 100 mL de agua destilada).
Preparar una solución buffer para controlar el pH entre 5.5 y 8.0, según el tipo de agua.
🧪 Procedimiento
Llenar los 6 vasos con 1 L de muestra cruda cada uno.
Ajustar el pH de cada vaso a diferentes valores (por ejemplo: 5.5, 6.0, 6.5, 7.0, 7.5, 8.0).
Añadir diferentes dosis de coagulante (ej. 10, 20, 30, 40, 50, 60 mg/L).
Agitar rápidamente (coagulación) a 100–120 rpm durante 1 minuto.
Reducir la velocidad a 30–40 rpm y agitar suavemente (floculación) durante 20 minutos.
Detener la agitación y dejar sedimentar 30 minutos.
Medir la turbidez del sobrenadante en cada vaso y registrar resultados.
🧮 Cálculo e interpretación
Dosis óptima: corresponde al punto donde se obtiene la menor turbidez residual con el menor consumo de coagulante.
pH óptimo: aquel en el que el coagulante presenta mayor eficiencia.
📋 Observaciones
El test de jarras permite optimizar el proceso real de planta, reduciendo costos de químicos y lodos.
Los flóculos deben ser visibles, compactos y sedimentar fácilmente.
Registrar pH final, turbidez inicial y final, color y aspecto del flóculo.
📚 Bibliografía
APHA. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater, Método 5560C, 2012.
Crittenden, J. C. Water Treatment: Principles and Design, Wiley, 2012.
🧫 Protocolo 8 – Determinación de la Demanda Química de Oxígeno (DQO)
💧 Introducción
La DQO suele ser mayor que la Demanda Bioquímica de Oxígeno (DBO₅) porque oxida también compuestos que no son biodegradables.
⚛️ Principio del método
La muestra se refluye con un agente oxidante fuerte, generalmente dicromato de potasio (K₂Cr₂O₇) en medio ácido y en presencia de un catalizador (sulfato de plata, Ag₂SO₄) y un inhibidor de cloruros (sulfato de mercurio, HgSO₄).
🧰 Materiales y reactivos
Matraz de reflujo de 250 mL con condensador.
Bureta, pipetas y soporte universal.
Estufa o bloque digestor (150 °C).
Reactivos:
Solución K₂Cr₂O₇ 0.04167 M.
Solución H₂SO₄ concentrado con Ag₂SO₄ (5 g/L).
Solución HgSO₄ (para eliminar interferencias de cloruros).
Solución FAS (0.25 N).
Indicador ferroína (1,10-fenantrolina + FeSO₄).
🧪 Procedimiento
Medir 50 mL de muestra (si la concentración es alta, diluir).
Añadir 1 g de HgSO₄ para precipitar cloruros.
Agregar 5 mL de K₂Cr₂O₇ 0.04167 M.
Añadir 15 mL de H₂SO₄ con Ag₂SO₄, con precaución (reacción exotérmica).
Colocar el condensador y refluir durante 2 horas a 150 °C.
Enfriar la mezcla.
Titular con FAS 0.25 N hasta cambio de color azul verdoso → rojizo.
Realizar un blanco con agua destilada.
🧮 Cálculo
El factor 8000 convierte equivalentes de oxígeno a mg/L.
⚠️ Seguridad
Usar guantes, gafas y campana extractora; los reactivos son altamente corrosivos.
Evitar el contacto directo con HgSO₄ (tóxico).
Desechar los residuos siguiendo el protocolo de manejo de desechos peligrosos (RESPEL).
📋 Interpretación
Valores bajos (< 20 mg/L): agua limpia o tratada.
20–200 mg/L: aguas moderadamente contaminadas.
200 mg/L: aguas residuales o fuertemente contaminadas.
📚 Bibliografía
APHA. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater, Método 5220 C, 2017.
Metcalf & Eddy. Wastewater Engineering: Treatment and Resource Recovery, 5ª edición.
🧬 Protocolo 9 – Determinación de la Demanda Bioquímica de Oxígeno (DBO₅)
💧 Introducción
La Demanda Bioquímica de Oxígeno (DBO₅) mide la cantidad de oxígeno disuelto que los microorganismos aeróbicos consumen al descomponer la materia orgánica biodegradable presente en una muestra de agua durante un período de cinco días a 20 °C.
⚛️ Principio del método
🧰 Materiales y reactivos
Botellas BOD de 300 mL (con tapón hermético).
Incubadora a 20 ± 1 °C.
Oxímetro o equipo de titulación Winkler.
Agua de dilución aireada y libre de DBO.
Semilla biológica (lodo activado, agua residual tratada o efluente).
Nutrientes:
Fosfato monopotásico (KH₂PO₄)
Fosfato dipotásico (K₂HPO₄)
Fosfato disódico (Na₂HPO₄·7H₂O)
Cloruro de calcio (CaCl₂)
Cloruro de magnesio (MgSO₄·7H₂O)
Cloruro férrico (FeCl₃·6H₂O)
🧪 Procedimiento
Preparar el agua de dilución, oxigenándola durante 24 h y añadiendo nutrientes.
Sembrar la muestra con semilla biológica (si es necesario).
Llenar las botellas BOD sin dejar burbujas.
Determinar el oxígeno disuelto inicial (ODi) mediante método Winkler o equipo digital.
Incubar las botellas a 20 °C por 5 días en oscuridad total.
Determinar el oxígeno disuelto final (ODf).
Calcular la DBO₅ usando la fórmula correspondiente.
🧮 Cálculo
Donde:
ODi = Oxígeno disuelto inicial (mg/L)
ODf = Oxígeno disuelto final (mg/L)
Db = DBO del blanco (mg/L)
P = Fracción de muestra en la botella (volumen de muestra / volumen total)
⚗️ Preparación del blanco y control
Preparar un blanco solo con agua de dilución y semilla para verificar que el oxígeno no se consuma significativamente.
El blanco no debe presentar consumo mayor a 0.2 mg/L O₂.
⚠️ Precauciones
Evitar la presencia de burbujas de aire en las botellas.
No exponer las muestras a la luz solar durante la incubación.
Asegurar un pH entre 6.5 y 7.5.
Si el OD final < 1 mg/L, repetir el ensayo con mayor dilución.
📋 Interpretación (valores típicos)
| Tipo de agua | Rango DBO₅ (mg/L) | Clasificación |
|---|---|---|
| Agua natural limpia | < 3 | Excelente |
| Agua doméstica tratada | 5 – 25 | Moderada |
| Aguas residuales sin tratar | 200 – 600 | Alta contaminación |
| Aguas industriales | > 1000 | Muy contaminada |
📚 Bibliografía
APHA. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater, Método 5210B, 2017.
Metcalf & Eddy. Ingeniería de Aguas Residuales, McGraw Hill, 5ª Ed.
Lozano-Rivas, W. Calidad fisicoquímica del agua, 2013.
